martes, 18 de diciembre de 2018

Inmunodifusión doble (Ouchterlony)


Inmunodifusión doble (Ouchterlony)

Objetivo:
 En esta práctica vamos a intentar determinar la identidad de un anticuerpo frente a distintos antígenos. En un gel de agarosa tamponado, el Ag y el Ac se cargan en unos pocillos perforados. Después de una difusión de entre 12 y 48 horas, el reconocimiento del Ag por el Ac se detecta por la formación de una línea de inmunoprecipitación entre los pocillos.
Materiales:
- Cámara húmeda (la fabricamos con cubetas y papel de filtro humedecido)
- Agarosa
- Pipetas y material de pipeteo
- Micropipetas y puntas de pipeta
- Placas de Petri pequeñas
- Cortadores para pocillos
- Plantilla de corte para pocillos
- Antisuero (Anticuerpo)
- Suero total (Antígeno)
- Albúmina (Antígeno)
- IgG (Antígeno)
- Tampón PBS
Procedimiento:
-1: Lo primero que tenemos que hacer  es preparar la placa con Agar.
     1.1.Para ello calentamos la solución de agarosa al 1% en tampón PBS en el microondas hasta su disolución.
     1.2.Dejamos que enfríe hasta unos 60 grados y vertemos la disolución en las placas, dejándolas reposar hasta que solidifiquen
-2: Ahora, empleando el  cortador de pocillos y unas pinzas, hacemos los agujeros con la usando la plantilla que incluye el protocolo. Hacemos 1 en el centro y 4 alrededor, separados entre si
-3: Después aplicamos 30 microlitros del tubo con antisuero (A) en el pocillo central de cada una de las tres placas del grupo, luego echaremos las cantidades correspondientes ( 30 microlitros en cada pocillo) de los tubos con suero entero (B), con albúmina (C) y con IgG (D)
-4: A continuación colocamos a cada placa la tapa ya rotulada y lo sellamos.La metemos en la cámara húmeda, donde estarán de 24- 48 horas.
 Resultado:
 Cuando ya han pasado el periodo de tiempo estipulado en la cámara húmeda es hora de sacarla y ver los resultados obtenidos. Podemos ver que la práctica ha salido correctamente ya que cuando le ponemos un foco de luz por debajo se puede ver las líneas trasparente que han surgido por el movimiento de la muestra y la unión entre Ag-Ac
 Galería:






Estreptolisina O liofilizada


Estreptolisina O liofilizada

Objetivo:
 En esta práctica vamos a emplear la técnica de la estreptolisina el cual tiene carácter inmunogénico de la SLO que permite valorar la extensión de una infección estreptocócica. La Estreptolisina O (SLO) liofilizada, que es un purificado procedente del cultivo de Estreptococos β-hemolíticos . Se trata de un producto estandarizado para la determinación cuantitativa del título de antiestreptolisina O, por la técnica de inhibición de la hemólisis. Donde, la presencia de un aglutinado indica que no hay cantidad suficiente de anticuerpos por lo que la formación de un precipitado indica la presencia de anticuerpos, que impiden la hemólisis de los glóbulos rojos al unirse el anticuerpo con el antígeno.
Materiales:
- Estreptolisina O liofilizada
- Tampón fosfato pH 6,5
- Suero
- Agua destilada
- Hematíes grupo O (suspensión al 3%)
- Placa de microtiter en U
- Pipetas automáticas y puntas

Procedimiento:
-1: Primero tenemos que rehidratar con agua destilada el vial de estreptolisina liofilizada, mezclándolo suavemente
-2: Ahora vamos a preparar las siguientes diluciones del suero del paciente:
0,2 ml suero + 1,8 ml tampón (1:10) 0,1 ml suero + 2,4 ml tampón (1:25)
-3: A continuación realizamos los siguientes pasos:
     3.1. Dispensamos 50 μL de tampón en cada pocillo de dos filas de la placa.
     3.2. Añadimos 50 μL de la dilución 1:10 al primer pocillo de la fila A.
     3.3. Añadimos 50 μL de la dilución 1:25 al primer pocillo de la fila B.
     3.4. A partir del primer pocillo efectuamos sucesivas diluciones con la ayuda de una pipeta, por pases de 50 μL.
     3.5. Añadir 25 μL de disolución de estreptolisina O rehidratada a todos los pocillos excepto en el último (nº 10) de la fila B.
     3.6. Agitamos suavemente e incubamos 15 min/37º C.
     3.7. Añadimos 25 μL de suspensión de hematíes al 3% a cada pocillo.
     3.8. Agitamos suavemente e incubamos 45 min/37º C, agitando después de los primeros 15 min.
     3.9. Dejar sedimentar durante unos 50-60 min a temperatura ambiente.
Resultado:
 Tras haber realizado estos procedimientos, vemos que hemos hecho correctamente todos los pasos y que hemos logrado ser meticulosos. Pese a algunas dificultades que se nos presentaron; pero pudimos solventarlas y rehacerla bien
 Galería:






Antígenos bacterianos


Antígenos bacterianos

Objetivo:
 En esta práctica vamos a intentar realizar una técnica de aglutinación en tubo para la detección y semicuantificación de anticuerpos anti-Salmonella, Brucella y Proteus en suero humano. Los reactivos (suspensiones bacterianas coloreadas y estandarizadas), aglutinan en presencia del anticuerpo homólogo correspondiente en las muestras ensayadas.
 Materiales:
- Micropipetas
- Puntas de pipeta
- Tubos
- Gradilla
- Reactivos con Ag bacterianos
- Control positivo y negativo
- Solución salina fisiológica
Procedimiento:
-1: Primero tenemos que preparar 6 tubos para S. typhi “O” y otros 6 tubos para S.typhi “H”. Lo que haremos es una serie de diluciones de la muestra, para semicuantificarla.
-2: Después añadiremos una gota de antígeno a cada tubo de los 6 tubos (diferenciando los tubos de S.typhi “O” y S.typhi “H”).
-3: A continuación agitamos para homogeneizar e incubamos a 37ºC durante 24 horas.
Resultados:
 El título es el último tubo que presenta aglutinación. El control positivo debe presentar aglutinación y el control negativo no, por lo que se vemos todo el líquido coloreado.
Galería:




PCR- turbilátex


PCR- turbilátex

 Objetivo:
 En esta práctica vamos a realizar un ensayo turbidimétrico para la cuantificación de proteína C- reactiva (PCR) en suero o plasma humano. Las partículas de látex recubiertas con Ac anti- PCR humana, son aglutinadas por PCR presente en la muestra del paciente. El proceso de aglutinación provoca un cambio de absorbancia proporcional a la concentración de PCR de la muestra, y por comparación con un calibrador de PCR de concentración conocida se puede determinar el contenido de PCR en la muestra ensayada.
MATERIAL:
- Suero como muestra
- Diluyente (R1)
- Látex (R2)
- CRP- CAL
- Micropipetas y puntas de pipeta (500, 200 y 5 microlitros)
- Baño de agua a 37ºC
- Espectrofotómetro ( que lea longitudes de onda de 540nm)
- Cubetas de espectrofotometría
- Tubos de 3 mL
PROCEDIMIENTO:
-1:Primero tenemos que reconstituimos el calibrador con 1 mL de agua destilada, mezclamos con suavidad y dejamos reposar durante 10 minutos.
-2:Después, vamos a calentar los reactivos a 37ºC y programamos el espectrofotómetro a una longitud de onda de 540 nm y lo ajustamos a 0 con un blanco de agua destilada.
-3: Ahora pipeteamos en dos cubetas distintas ( una correspondiente al patrón y otra a la muestra) las siguientes cantidades:
-4: Por último mezclamos y leemos las absorbancias, primero el patrón ( medimos una vez inmediatamente y otra vez a los 2 minutos de efectuada la mezcla) y a después el mismo proceso con la cubeta de la muestra

Resultado:
 Tras haber realizado todos los procesos anteriores, tenemos que hacer los cálculos estipulados para hallar el resultado de la muestra. Para ello seguimos la siguiente fórmula:
((A1- A2) muestra / (A1- A2) patrón )x concentración del calibrador= mg/ dL PCR
Al poner los datos obtenidos en la práctica nos da:
( 1- 1, 0357)/ (0.82- 0.86) x 64= 56,96 mg/dL PCR.

Determinación cualitativa de Proteina C- Reactiva (PCR)


Determinación cualitativa de Proteina C- Reactiva (PCR)

 Objetivo:

 En esta práctica vamos a realizar una técnica de aglutinación en porta para la detección cualitativas de PCR. Esta proteína está presente en todos los individuos, no obstante cuando el individuo sufre un proceso de inflamación bacteriana dicha proteina crece notoriamente al paso de un par de horas.

 Materiales:

 - Agitador mecánico rotatorio
 - Agitador vortex
 - Pipetas de 50 microlitro
 - Suero fresco como muestra

 Procedimiento:

 -1: Primero atemperar los reactivos y muestras a temperatura ambiente
 - 2: Ahora depositamos 50 microlitro de la muestra en cada círculo y a su vez una gota de cada control positivo y negativo
 - 3: Después mezclamos el reactivo de PCR-latex con las gotas que hemos hechado antes
 - 4: A continuación mezclamos las gotas con un palillo, extendiendo la mezcla por todo el círculo
 - 5: Por último ponemos el porta en un agitador durante dos minutos; ojo no nos podemos pasar de tiempo porque saldrán falsos positivos

 Resultado:

 Tras haber realizado estas prácticas, podemos hacer un examen macroscópico la presencia de aglutinaciones inmediatas tras retirar el porta del agitador. Cuando se da la presencia de aglutinación significa que hay concentración de PCR. Tras haber hecho el título de PCR, gracias a ver cual es el último círculo en el que han aglutinado, tenemos que hacer los cálculos siguientes:
 6X Título de PCR=mG/dL

 A nosotros nos dió como título de PCR 4, por lo que multiplicamos por 6. Sacando como conclusión que la muestra tiene 24mg/dl de PCR

Determinación cualitativa de anticuerpos anti-Brucella


Determinación cualitativa de anticuerpos anti-Brucella

Objetivo:

 En esta práctica vamos a emplear una técnica de aglutinación en porta para la detección cualitativa de anticuerpos anti-Brucela en el ser humano. En donde la suspensión bacteriana es aglutinada por anticuerpo IgG presente en el suero del paciente

Materiales:

- Agitador mecánico
- Agitador vortex
- Pipeta de 50 microlitro

 Procedimiento:

 -1: Primero tenemos que atemperar los reactivos y muestra
 -2: Ahora depositamos 50 microlitros de la muestra y una gota de cada control sobre los círculos
 -3: Después vamos a mezclar los reactivos  de R. bengala en el vortex y vertempos una gota cada uno de las gotas anteriores
 -4: A continuación mezclamos las gotas con un palillo y extendiendolo por todo el círculo
 -5: Por último situamos el porta sobre el agitador rotatorio durante 4 minutos

 Resultado:

 Ahora que hemos hecho todo el procedimiento hacemos una evaluación macroscópica y vemos la ausencia o presencia de aglutinaciones tras haber quitado el porta del agitador. Vemos cual es el título obtenido y multiplicamos por 25. En nuestro caso el título es 2; por lo que 2X25= 50 Ul/mL

 Galería:





Determinación cualitativa de factor reumatoide


Determinación cualitativa de factor reumatoide

 Objetivo:

 En esta práctica vamos a realizar una técnica de aglutinación en porta cualitativa, para detectar el factor reumatoide en una muestra de suero humano. Ya que las partículas de latex recubiertas con gamma-globulina humana son aglutinadas por factores reumatoides presentes en la muestra del paciente

 Materiales:

- Agitador mecánico
- Agitador vortex
- Pipeta de 50 microlitro
- Látex, que lo usaremos como reactivo
- Suero animal como control -
- Suero humano como control positivo

 Procedimiento:

 -1: Primero tenemos que atemperar los reactivos y muestra
 -2: Ahora depositamos 50 microlitros de la muestra y una gota de cada control sobre los círculos
 -3: Después vamos a mezclar los reactivos  de FR. látex en el vortex y vertemos una gota cada uno de las gotas anteriores
 -4: A continuación mezclamos las gotas con un palillo y extendiendolo por todo el círculo
 -5: Por último situamos el porta sobre el agitador rotatorio durante 2 minutos

 Resultado:


 Ahora que hemos hecho todo el procedimiento hacemos una evaluación macroscópica y vemos la ausencia o presencia de aglutinaciones tras haber quitado el porta del agitador. Vemos cual es el título obtenido y multiplicamos por 8. En nuestro caso nos dió que el título era de 3; por tanto 8X3=24 Ul/mL

 Galería:





Determinación cualitativa de anti-estreptolisina


Determinación cualitativa de anti-estreptolisina

 Objetivo:

 En esta práctica vamos realizar una técnica de aglutinación en porta para la detección cualitativa de anti-estreptolisina en suero humano. Las partículas de látex recubiertos con estreptolisina O, son aglutinadas por anticuerpos ASO, presente en la muestra del paciente

 Materiales:

- Agitador mecánico
- Agitador vortex
- Pipeta de 50 microlitro
- Látex, que lo usaremos como reactivo
- Suero animal como control -
- Suero humano como control positivo  

 Procedimiento:

 -1: Primero tenemos que atemperar los reactivos y muestra
 -2: Ahora depositamos 50 microlitros de la muestra y una gota de cada control sobre los círculos
 -3: Después vamos a mezclar los reactivos  del ASO-látex en el vortex y vertemos una gota cada uno de las gotas anteriores
 -4: A continuación mezclamos las gotas con un palillo y extendiendolo por todo el círculo
 -5: Por último situamos el porta sobre el agitador rotatorio durante 2 minutos

Resultado:

 Ahora que hemos hecho todo el procedimiento hacemos una evaluación macroscópica y vemos la ausencia o presencia de aglutinaciones tras haber quitado el porta del agitador. Vemos cual es el título obtenido y multiplicamos por 200. En nuestro caso el título a sido de 4; por tanto 4X200= 800 Ul/mL

 Galería: